3.动物麻zui以3.6％水合氯醛腹腔内注射麻zui(10ml/kg)，注射qi针头从腹部向头方向刺入腹腔，回抽针芯阻力较大、无回血、无胃肠道内容物时，缓慢推注。约10min后大鼠逐渐瘫软，反应淡漠，用手牵拉鼠尾无明显反抗时置仰卧位，大鼠脑缺血再灌注造模，固定上颌中切牙和四肢。实验过程中维持大鼠肛温在37℃左右，直到恢复活动。4.手术步骤手术按外ke无菌原则操作。①备皮，碘伏消毒皮肤。②于正中线旁开约5mm处，行颈部右侧纵行切口，剪开浅筋膜，暴露右侧胸锁乳突肌，在胸锁乳突肌与颈前肌群之间向深部钝性分离，暴露颈动脉鞘，玻璃分针游离颈总动脉(CCA)和迷走神经，直至CCA分叉处。钝性分离向内行走的颈外动脉(ECA)及向外后行走的颈内动脉(ICA)。大鼠脑缺血再灌注造模还可以结合行为测试来评估脑缺血再灌注损伤对大鼠行为功能的影响。通过进行认知、运动和情绪行为等方面的测试，研究人员可以了解脑损伤对大鼠行为表现的影响，为相关疾病的行为症状提供实验依据。大鼠脑缺血再灌注造模的成功与否受多种因素影响。例如，操作的准确性、缺血时间的选择以及再灌注的时间和方式等都可能对模型的可靠性和重复性产生影响。因此，在进行实验前需要充分了解和掌握相应的操作技术。神经功能评价和行为学评价主要用于反映脑缺血再灌注模型动物的神经行为表现和损伤程度，常用的方法有Longa评分法、Bederson评分法、Zealander梯形迷宫法、Morris水迷宫法等。脑血流测量主要用于监测动物的脑血流变化和再灌注效果，常用的方法有激光多普勒血流仪、核ci共振灌注成像等。脑组织染色主要用于观察动物的脑组织结构和病理变化，常用的方法有TTC染色、HE染色、Nissl染色等。生化指标检测主要用于测定动物的血液或脑组织中的一些相关物质的含量和活性，如乳酸脱氢酶、超氧化物歧化酶、丙二醛等。分子生物学检测主要用于分析动物的基因表达和蛋白质水平的变化，如RT-PCR、Westernblot、免yi组化等。大鼠脑缺血再灌注造模-英瀚斯(图)由南京英瀚斯生物科技有限公司提供。南京英瀚斯生物科技有限公司位于江苏省南京市栖霞区和燕路371号东南大学国家大学科技园科创楼A301。在市场经济的浪潮中拼博和发展，目前英瀚斯在技术合作中享有良好的声誉。英瀚斯取得全网商盟认证，标志着我们的服务和管理水平达到了一个新的高度。英瀚斯全体员工愿与各界有识之士共同发展，共创美好未来。)